3 просмотров
Рейтинг статьи
1 звезда2 звезды3 звезды4 звезды5 звезд
Загрузка...

Породы кролей которые используются в лабораторных исследованиях

Лабораторный кролик

Кролик существует рядом с человеком на протяжении многих столетий. В отдельных странах его количество было настолько велико, что приходилось подвергать животных уничтожению. Нашествие кролей уничтожало всё на своём пути, будь то посевы или сады. Они так сильно объедали растительность, что даже овцы оставались без корма. В борьбе с повышенной популяцией животных боролись разными способами: отстреливали, завозили хищников, применяли яды, делали высокие изгороди вокруг своих хозяйств, но всё это было малоэффективно. Уменьшить количество кролей помогло заболевание миксоматоз. Его переносчиком считались блохи. Но выжившие особи выработали устойчивый иммунитет к заболеванию и начали опять активно размножаться.

В наше время в отдельных районах Австралии до сих пор существуют запреты на выращивание кролей. Несмотря на это, их мясо активно используется в пищу. Благодаря своим диетическим качествам, его можно применять детям с раннего возраста и взрослым, которым запрещено употреблять другие виды мяса.

Лабораторные исследования на кроликах

Однако кролик оказал немалую помощь науке. Его начали использовать для проведения лабораторных исследований. Кроль – классическое лабораторное животное. На нём проводят научные опыты по применению различных гормональных препаратов, вакцин, сывороток. А всё потому, что животное хорошо реагирует на токсины стафилококков. Во время овуляции крольчих, отлично изучаются функции яичников.

Используя модели заболеваний сибирская язва, сальмонеллезы, ботулизм, столбняк, псевдотуберкулёз, экспериментальные опухоли, ревматизм, сифилис, стрептококковые инфекции, у кролей исследовали аллергические реакции на них. Из-за того, что эмбриогенез животных схож с эмбриогенезом человека, то на них воспроизводили тератогенное действие талидомида. С помощью кролей проверяют активность таких гормональных лекарств как адреналин, инсулин, проводят проверки вакцин на бешенство, в онкологической практике на них изучают различные опухоли, также животные являются объектами иммунологических исследований.

Обладая изолированным ухом, кроли отлично подходят для исследований влияния на сосуды фармакологических веществ. Всё потому, что у животного приспособлена к различным температурам ушная раковина, и она не требует дополнительного подогрева. Через её сосуды пропускают раствор, что позволяет ему проявить жизнедеятельность уже при комнатных температурах и при этом не требуется дополнительной подачи кислорода. При добавлении в раствор адреналина, просвет у сосудов заметно сократится.

Чтобы провести тест на пирогенность, используют только кролика, так как он единственный лабораторный вид, который поможет определить нежелательные примеси в препарате, вызывающие лихорадку. А всё потому, что животные обладают высокой чувствительностью к пирогенам, и в их ушные вены неограниченно вводятся лекарства в нужном объёме. Во время таких тестов проводят измерение температуры в начале и конце опыта. При повышении температуры выше допускаемой нормы, лекарство считается пирогенным.

Проверить влияние препаратов можно на кролях-альбиносах. Слёзы с их глаз выделяются меньше, чем у других животных, а пигмент глаз отсутствует. Это позволяет определить эффект фармакологических веществ и факторов. Так, при фиксации животного, капают проверяемый препарат на роговицу и наблюдают за её изменениями. Таким образом, был испытан препарат фотодитазин, который в последствие стал широко применяться в онкологии. Чтобы определить его токсичность, установили дозу, которая не нарушала бы ничего в организме.

На кролях в последнее время тестируют косметический продукт на основе ботулинических токсинов. Его применяют, чтобы устранить мимические морщины.

Породы кролей, которые используются в лабораторных исследованиях

В ходе клинических испытаний были обозначены породы кроликов, которые больше всего подходят для использования в этих целях. Среди них популярными видами стали:

Первый вывели в Америке. Он обладает средними размерами и чистым белым оттенком, нрав миролюбивый. К нам завезен в конце двадцатого века. Новозеландцам характерен активный рост. Взрослые особи плодовиты, их помёт составляет до 12 кольчат. Лучше всего выращивать их, используя бройлерную технологию. Ещё одним плюсом этого вида будет хорошее укрытие подошвы шерстью, что хорошо сказывается на содержании в клетках с сетчатыми полами.

У нас в советское время для лабораторных целей широко использовали кролей породы шиншилла. Они были выведены во Франции в начале двадцатого века и своё название получили из-за большого сходства меха с мехом шиншиллы. Местная порода шиншилла была выведена в последствие. Она стала результатом скрещивания основной породы с породой фландр альбинос.

Требования к лабораторным кроликам

Основным и главным требованием к кролям будет их полноценное здоровье. Животные не должны иметь каких-либо патологий и носить вредные микробы. Чтобы в научные лаборатории попадали только здоровые особи, их выращивают в специализированных питомниках. С них животных привозят в научно-исследовательские лаборатории. Кролям создают все необходимые условия для жизни, обеспечивают правильным питанием исходя из потребностей эксперимента.

В питомниках у кролей происходит интенсивное содержание. Их жизненный цикл недолог. Очень часто в таких колониях могут возникнуть различные инфекционные, паразитарные заболевания, которым не подвержены одомашненные особи. В связи, с чем постоянно проводится работа ветеринарами таких учреждений по улучшению лабораторного вида животного. На сегодняшний момент лабораторный кролик улучшился. В эмбрионы крольчат ввели ген мыши, который отвечает за устойчивость к гепатиту В, результатом стало получение кролей устойчивых к этому заболеванию, что в последствие передаётся по наследству. Подобные технологии позволяют в дальнейшем получать лабораторных кролей, которые будут обладать новыми свойствами, что позволит их использовать в научных исследованиях.

Методика вскрытия и извлечения органов лабораторных животных. Сообщение 5: кролик, хорек

К.Е. Коптяева, ветеринарный врач-патоморфолог отдела гистологии и патоморфологии,
Ж.Ю. Устенко, ветеринарный врач-патоморфолог отдела гистологии и патоморфологии,
Е.В. Беляева, ветеринарный врач-патоморфолог отдела гистологии и патоморфологии,
Я.А. Гущин, руководитель отдела гистологии и патоморфологии,
М.Н. Макарова, доктор медицинских наук, директор,
В.Г. Макаров, доктор медицинских наук, профессор, зам. директора

НПО «Дом Фармации»

188663, Россия, Ленинградская обл., Всеволожский р-н, г.п. Кузьмоловский, ул. Заводская, д. 3, корп. 245

Резюме

Представлено 5-е сообщение из цикла статей по методологии вскрытия и извлечения органов лабораторных животных, в которое подробно описывается и иллюстрируется методика последовательного и полного вскрытия и извлечения органов лабораторных кроликов и хорьков. Кролики подходят для проведения длительно текущих исследований, а также они — единственные лабораторные грызуны, с помощью которых можно получать рекомбинантные фармацевтические белки и исследовать перорально или внутрижелудочно вводимые лекарственные формы без нарушения целостности таблеток. Кроме того, кроликов широко используют для разработки и изучения новых хирургических методов, физиологических тестов и исследования различных видов токсичности для тестирования лекарственных препаратов. На хорьках изучают различные вирусные и бактериальные заболевания, а также патологии органов слуха, органов зрения, рвотный рефлекс из-за сходства многих анатомических, метаболических и физиологических особенностей с человеком.

В статье описана методика некропсии от процедуры внешнего осмотра трупа, последовательного вскрытия и осмотра грудной и брюшной полостей, и до извлечения органов, выделения различных костных препаратов. Описаны и проиллюстрированы возможные методы извлечения органов ротовой полости (в том числе извлечение языка и глотки), всех органов грудной, брюшной и тазовой полостей. Рассмотрен способ извлечения головного мозга, метод выделения препаратов грудной кости для дальнейшего гистологического исследования костного мозга и верхней челюсти для гистологического исследования носовых ходов. Представлена процедура подготовки участка спинного мозга к фиксации в формалине без извлечения его из позвоночного канала. Продемонстрированы методы извлечения глаз вместе со слезной железой и веками единым органокомплексом, а также извлечения мышц и прилежащих к ним периферических нервов. Способы извлечения органов и последовательность выполняемых действий, представленные в данной статье, обеспечивают минимизацию повреждений извлекаемых органов, предотвращают их загрязнение с целью недопущения возникновения некоторых артефактов, выявляемых при последующем гистологическом исследовании.

Введение

Кролики и хорьки – стандартные биологические модели для изучения свойств лекарственных препаратов (токсичности, фармакокинетики), а также моделирования некоторых патологий человека и других животных, как врожденных, так и приобретенных.

Лабораторные кролики подходят для длительно текущих исследований, например для оценки метаболизма липопротеидов, моделирования и изучения сердечно-сосудистых патологий, в частности атеросклероза, гипертрофической кардиомиопатии. Кролики – единственные лабораторные грызуны, с помощью которых можно получать рекомбинантные фармацевтические белки. Также они являются уникальными моделями для исследования перорально или внутрижелудочно вводимых лекарственных форм, так как только кроликам можно ввести таблетки без нарушения целостности их оболочек. Кроме того, лабораторных кроликов используют для разработки и изучения новых хирургических методов, физиологических тестов и исследования различных видов токсичности для тестирования лекарственных препаратов [8].

Хорьки чаще всего выступают в качестве тест-системы для изучения вирусных заболеваний вследствие их высокой восприимчивости, в частности к вирусу гриппа. Помимо этого, на хорьках нередко проводят исследования органов слуха, зрения, рвотного рефлекса, бактериальных инфекций. В последнее время хорьки все чаще предлагаются в качестве альтернативы более крупным лабораторным животным – собакам и приматам по причине сходства многих анатомических, метаболических и физиологических особенностей с человеком [5].

Цель данной работы – разработка методики вскрытия и извлечения органов лабораторных кроликов и хорьков.

Данная методика разрабатывалась в НПО «Дом Фармации» на самцах и самках кроликов (n=15) и хорьков (n=6). Масса исследованных животных составляла: самцов кроликов – 2,0–5,0 кг, самок кроликов – 2,0–5,0 кг, самцов хорьков – 0,5–1,0 кг, самок хорьков – 1,0–2,0 кг. Для исследования использовали животных, подлежащих эвтаназии в ходе текущих экспериментов. Специально для отработки методики некропсии животных не эвтаназировали.

Животные были подвергнуты эвтаназии с помощью передозировки анестетиком [7, 9], а именно препаратами «Ксила» и «Золетил», вводя максимальный объем вещества для наркотизации исследуемых животных. После установления факта смерти выполняли некропсию с извлечением органов и тканей.

Методика вскрытия и извлечения органов

1. Провести общий осмотр животного на наличие внешних изменений кожного покрова, слизистых оболочек, обнаружения любого рода повреждений.

2. Положить труп животного на спину и зафиксировать конечности при помощи резинок в устройстве для фиксации (рис. 1, а).

3. Обильно смочить шерстный покров шеи, грудной и брюшной стенки водой.

4. Пинцетом захватить и приподнять кожу с подлежащей подкожной клетчаткой в каудальной части живота, надрезать ее и сделать продольный разрез по белой линии живота от паха до основания нижней челюсти таким образом, чтобы брюшная стенка осталась неповрежденной (рис. 1, б, в).

5. Сделать по 2 разреза кожи в области паха от средней линии к конечностям.

6. Отсепарировать кожу в области брюшной стенки у кроликов – тупым концом ножниц или аккуратно, стараясь не сдавливать брюшную стенку, отделить кожу пальцами; у хорьков – отсепарировать кожу и подкожную клетчатку ножницами или скальпелем (рис.1, г), далее оттянуть и зафиксировать кожные лоскуты резинками (рис. 1, д).

7. Для вскрытия брюшной полости необходимо сделать разрез мышечной стенки от паха вдоль средней линии, приподняв пинцетом участок брюшной стенки (рис. 2, а, б).

8. Грудную полость необходимо вскрыть 2 разрезами (слева и справа) по бокам от грудины (по средне-подмышечной линии) косо краниально, перерезая ребра и мягкие ткани (рис. 2, в, г).

9. Для исследования костного мозга отобрать грудную кость целиком, отделив от нее мечевидный отросток, ребра и мягкие ткани (рис. 3).

10. Извлечь грудную долю тимуса, расположенную между листками предсердечного средостенья (рис. 4).

11. Извлечь сердце, перерезав удерживающие его сосуды (рис. 5).

12. Извлечь нижнечелюстные слюнную железу и лимфатические узлы (рис. 6).

13. Удалить мышцы, лежащие над трахеей (рис. 7, а, б) и извлечь гортань с трахеей, щитовидной и паращитовидной железой (рис. 7, в–е)

14. Для извлечения языка и глотки сделать разрезы дна ротовой полости скальпелем (рис. 8, а, б). После этого захватить отсепарированные мышцы и язык и оттянуть каудально (рис. 8, в). Далее сделать надрез в области твердого неба у входа в глотку, сохранив целостность глотки (рис. 8, г). Отделить язык вместе с глоткой (рис. 8, д, е).

15. Для извлечения легких, участка трахеи и пищевода перерезать зафиксированные пинцетом трахею и пищевод в области шеи (рис. 9, а). Затем отделить пищевод от аорты, аккуратно подтягивая органокомплекс краниально, после чего перерезать трахею и пищевод в области диафрагмы (рис. 9, б) и извлечь органокомплекс (рис. 9, в).

16. Отделить пищевод от извлеченного ранее органокомплекса (рис. 10).

17. Отделить оставшуюся в грудной полости аорту от позвоночника (рис. 11).

18. Извлечь селезенку, расположенную в области левого подреберья брюшной полости (рис. 12, а, б). Далее отделить селезенку от жировой ткани (рис. 12, в, г).

Читать еще:  Пододерматит у кроликов как лечить и предотвратить

19. Извлечь участок поджелудочной железы, лежащий в брыжейке двенадцатиперстной кишки (рис. 13).

20. Извлечь желудок, отделив его в краниальной части от пищевода (рис. 14, а), а в каудальной – от двенадцатиперстной кишки (рис. 14, б, ж). У хорька: сделать разрез желудка по большой кривизне (рис. 14, в, г) и прополоскать в физиологическом растворе (рис. 14, д, е), освободив от содержимого. У кролика: сделать разрез желудка по большой кривизне (рис. 14, з), после чего удалить содержимое (большое количество растительного корма) и прополоскать в физиологическом растворе (рис. 14, и, к), освободив от остатков кормовых масс. Обратите внимание, что после вскрытия желудка нельзя прикасаться к его слизистой оболочке, для промывания захватить его пинцетом с внешней стороны (со стороны серозной оболочки).

21. Извлечь фрагменты тонкой и толстой кишки длиной 3–4 см: тонкую – отступив от желудка около 3 см (рис. 15, а, б); толстую – у хорька извлечь участок, отступив краниально от прямой кишки около 3 см (рис. 15, в, г); у кролика – извлечь часть восходящей ободочной кишки (рис. 15, д, е). После извлечения отделить от окружающих тканей и освободить от содержимого, прополоскав в физиологическом растворе.

22. Извлечь печень вместе с желчным пузырем. Для этого перерезать удерживающие орган серозные связки: венечную, прикрепляющуюся к диафрагме, почечно-печеночную, желудочно-печеночную и печеночно-двенадцатиперстную (рис. 16, а–в). У кроликов и хорьков после взвешивания отбирается по кусочку размером около 3х3 см от каждой доли, а также участок, к которому прилежит желчный пузырь.

23. Извлечь надпочечники (рис. 17, а) и отделить от окружающей жировой ткани (рис. 17, б, в). Извлечь почки (рис. 17, г) и отделить от окружающей жировой ткани (рис. 17, д, е).

24. При необходимости исследования мочи провести ее отбор при помощи шприца перед иссечением мочевого пузыря (рис. 18, а). Извлечь орган, перерезав шейку пузыря (рис. 18, б).

25. У самок: извлечь правый и левый яичники (рис. 19, б); извлечь матку – шейку, тело и рога (рис. 19, в–д).

26. У самцов: отделить семенники вместе с придатками (рис. 20, а, б), отделить придатки от семенников (рис. 20, в, г). Извлечь предстательную железу (рис. 20, д, е).

27. Извлечь глаз вместе с веками, слезной железой и зрительным нервом. Сделать круговой надрез кожи вокруг глаза (рис. 21, а). Далее, удерживая веки пинцетом, постепенно надрезать подлежащие ткани (рис. 22, б, в), извлекая глазное яблоко, зрительный нерв и прилежащую слезную железу (рис. 22, г).

28. Извлечение головного мозга осуществляется следующим образом. Отсепарировать кожу и подлежащие мягкие ткани от затылка до переносицы (рис. 22, а–д). Вскрыть черепную коробку двумя распилами (рис. 22, е), соединив их сзади на большом отверстии затылочной кости, а спереди – как показано на рис. 22, ж (для хорьков) и рис. 22, з (для кроликов). После вскрытия черепа удалить черепную коробку и извлечь головной мозг (рис. 23, и–л).

29. Для лучшей фиксации слизистой оболочки носовой полости необходимо предварительно промыть носовые ходы раствором фиксатора (рис. 23, а). Отбор тканей носовых ходов и синусов производится следующим образом: после извлечения головного мозга отделить от черепа кожу и мышцы (рис. 23, б). Осторожно, избегая повреждения рук верхними резцами, выполнить поперечный распил верхней челюсти на уровне глаз (рис. 23, в), тем самым отделяя препарат носовых ходов (рис. 23, г).

30. Гипофиз (рис. 24) фиксируется вместе с черепом после извлечения головного мозга, удаления мягких тканей, нижней челюсти и препарата носовых ходов.

31. Извлечь необходимые скелетную мышцу и периферический нерв. Для этого сделать глубокий разрез кожи, отпрепарировать кожу и фасции, затем извлечь скелетную мышцу и нерв (рис. 25).

32. Фиксация отделов спинного мозга производится вместе с позвоночным столбом без извлечения мозга из спинномозгового канала. При необходимости, предусмотренной планом исследования, позвоночник извлечь целиком, перед фиксацией разделив его на соответствующие анатомические отделы; в том случае, если такой необходимости нет – извлечь участок поясничного отдела (3–5 сегментов) (рис. 26, а, б). Для подготовки спинного мозга к фиксации необходимо рассечь вдоль позвоночника мышцы спины, пересечь с обеих сторон поперечные отростки позвонков и ребра, после чего максимально очистить позвоночный столб от мягких тканей (рис. 26, в)

Заключение

Предложена методика, которая позволяет:

  • обеспечить полное последовательное вскрытие лабораторных животных для досконального исследования всех полостей, систем органов и различных частей тела животного;
  • провести извлечение всех необходимых органов и тканей, в том числе предусмотренных планом исследования;
  • минимизировать повреждения структур и избежать загрязнения в процессе некропсии органов и тканей, исключая возникновение некоторых артефактов при последующем гистологическом исследовании.

Кролик как лабораторное животное

Чтобы не навредить людям, все новые изобретения в области медицины и косметики испытывают на животных. Сегодня для таких исследований используют практически всех известных животных. Рассмотрим, какой вклад в развитие медицины вносят кролики, как их отбирают и каким образом получают результаты.

Кто такие лабораторные кролики

Так как кролики от природы наделены хорошей жизнестойкостью и плодовитостью, они идеально подходят для исследований.

Лабораторных кроликов используют с целью:

  • облегчения диагностики разных заболеваний;
  • обозначения патогенности разных штаммов микроорганизмов;
  • получение новых штаммов;
  • исследования действия вновь лекарств и вакцин;
  • получения гемолитических сывороток и эритроцитов;
  • моделирования процесса воспаления и изучения дальнейшей реакции организма;
  • изготовления на основе крови и органов животных питательной среды, для выращивания возбудителей заболеваний для исследования.

Основные требования

Разведение грызунов, которые будут использоваться для экспериментов, проводят в специальных питомниках, которые содержатся при лабораториях, это позволяет получать качественный материал для исследований. Главным требованием к кроликам является полноценное здоровье. Так как в питомниках, где выращивают кролей для лабораторий, происходит интенсивное содержание, их жизнь довольно недолгая. К тому же в таких местах достаточно часто возникают разные заболевания, которые никогда не возникнут у одомашненных особей.

Какие породы чаще всего используют

Многолетние клинические испытания выявили породы кролей, которые больше всего подходят для испытаний:

  • Новозеландский белый;
  • Шиншилла.

Какие заболевания тестируют

Чаще всего кролей используют для тестирования следующих заболеваний:

  • стрептококк;
  • псевдотуберкулёз;
  • ревматизм;
  • сибирская язва;
  • сальмонелла;
  • ботулизм;
  • лихорадка;
  • экспериментальные опухоли.

Основные способы заражения животных

Заразить кроля можно несколькими способами. Рассмотрим их подробнее.

Внутривенный способ

Для заражения используют краевую вену уха. Место, куда будет сделан укол, тщательно дезинфицируют, а потом проводят манипуляции для набухания вены, протирая ксилолом. Во время введения препарата нужно вызвать гиперемию, для этого хвост погружают в тёплую воду.

Инфицирование через желудочно-кишечный тракт

Проводят двумя способами:

  1. Животное переворачивают вниз головой, делают это для того, чтобы все внутренности передвинулись к диафрагме и во время проведения укола не были повреждены кишечник, мочевой пузырь и половые органы. Место для укола определяют следующим образом: живот делят на три части, местом прокола будет нижняя часть. Кожу дезинфицируют, берут складку, вводят иглу, потом поворачивают её под прямым углом и быстрым толчком прокалывают брюшную стенку. Этот способ позволяет сразу ввести достаточно большое количество заразного материала.
  2. Смешивают микробную смесь с кормом, в этом случае достаточно сложно учесть дозу. Намного лучшие результаты получают, когда материал просто закапывают в рот. Для этого зверька фиксируют, с помощью пинцета открывают рот и медленно, капля за каплей, вводят материал, при этом кролик должен проглотить каждую каплю.

Интрацеребральное инфицирование

Такое инфицирование проводят под наркозом, с помощью прокола тонкой кости в области надглазной борозды. Важно материал вводить медленно, чтобы не привести к повышению внутричерепного давления и потере вводимого материала.

Проведение эксперимента

Перед заражением животного проводят подготовку к процедуре и готовят материал. Рассмотрим, как это делается.

Подготовка к заражению

Перед началом эксперимента животное:

  1. Клеймят. Отпечаток ставят на ухе, которое предварительно обрабатывают спиртом.
  2. Взвешивают. Это можно сделать на любых имеющихся весах, поместив на них кролика.
  3. Определяют пол. Животное держат за уши и холку, оттягивают хвост и ощупывают область полового отверстия: если там щель, то это самка, в противном случае это самец.
  4. Измеряют температуру. Для этого кончик термометра, смазанный вазелином, вводят в прямую кишку.

Материал для инфицирования животных

Бактерии, которые вводят животному, выращивают в подходящей питательной среде, соблюдая все условия. Чаще всего материалом выступают: биологические жидкости больного — кровь, плазма, мокрота, выделение из половых путей, а также части заражённых тканей и органов.

Фиксация кроликов

Подобные манипуляции проводят для того, чтобы введение биологического материала осуществлялось максимально быстро и качественно. Животное укладывают на левый бок, одной рукой держат холку, другую размещают на животе. Теперь зверька вытягивают во всю длину.

Содержание и кормление кроликов в лабораторных условиях

Чтобы получить максимально правильные результаты экспериментов, важно обеспечить зверькам полноценное содержание и кормление. Рассмотрим, что включают в себя эти требования.

Особенности содержания животных

Лабораторных кроликов содержат в научно-исследовательских учреждениях, которые называются вивариями. Здания должны быть расположены на возвышенности, в сухом месте, по близости устраивают вольеры, к тому же рядом должен располагаться земельный участок. Вся территория должна быть обнесена глухим забором.

Лабораторным животным должны быть обеспечены:

  • полноценное кормление и уход;
  • поддержание оптимального состояния здоровья;
  • возможность удовлетворения физиологических потребностей;
  • содержание в соответствующих условиях;
  • ежедневный контроль содержания.

Кролики могут быть размещены индивидуально или группами, всё зависит от вида исследования. В первом случае используют боксовую систему содержания. При таком содержании каждая особь имеет отдельную комнату для жизни, доступ к сену и другому корму, а также питью.

При групповом содержании, в одной клетке содержат до 6 особей, у каждого зверька те же права, как и при индивидуальном содержании.

Из каких отделов состоит виварий

Правильно построенный виварий состоит из следующих отделов:

  1. Карантинный. В него помещают вновь прибывших особей.
  2. Экспериментальный. В нём находятся кроли, которые принимают непосредственное участие в опытах.
  3. Изоляционный. В него помещают зараженных животных, которых ещё рано ликвидировать.
  4. Манипуляционный кабинет. Тут проводят обследование зверьков перед началом эксперимента, а также берут кровь и вакцинируют.

Для обеспечения работы имеются также следующие помещения:

  • биохимическая и гематологическая лаборатории;
  • гистологическая лаборатория;
  • помещения для хранения фармацевтических субстанций и препаратов;
  • комната персонала.

Чем кормят

Для чистоты эксперимента важно правильно кормить животное не только до заражения, но и после. Рацион должен быть максимально сбалансированным.

В нём должно в обязательном порядке присутствовать:

  • зерно;
  • семена льна;
  • морковь;
  • свёкла;
  • картофель;
  • трава;
  • пророщенный овёс.

Для пополнения уровня жидкости в организме дают воду или пастеризованное молоко. Несоблюдение этих норм приведёт к снижению иммунитета, что будет способствовать развитию нежелательных заболеваний, а также негативно сказываться на проведении эксперимента, искажать его результаты.

Что делают с умершими животными

После того, как животное погибло, его помещают в холод на сутки. Когда кролик погибает во время эксперимента, его вскрывают. После тушки сжигают.

Как видно, кролики — животные, которых используют не только для мяса или шкурок, а также в качестве домашнего животного, но и для лабораторных исследований. Как бы грустно это не звучало, они своей смертью помогают людям решить многие проблемы со здоровьем.

IX Международная студенческая научная конференция Студенческий научный форум — 2017

КРОЛИК КАК МОДЕЛЬНЫЙ ОБЪЕКТ В БИОЛОГИИ И ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНОЙ МЕДИЦИНЕ

Одним из наиболее распространенных таких модельных объектов является кролик [1-5]. Он произошел от дикого кролика (Oryctolagus cuniculus), родина которого находится в Юго-Западной Европе и Северно-Западной Африке. Кролик был известен в глубокой древности и упоминается в ряде произведений античных писателей. Разведение кроликов в неволе описал Конфуций в четвертом веке до нашей эры. Римляне, пришедшие в Испанию, называли ее «кроличьей страной». На Руси кроликов разводили еще при Ярославе Мудром. С девятнадцатого века стали широко использовать шкурки кроликов, что послужило причиной их усиленного разведения. Когда произошло одомашнивание кроликов, точно никто не знает [5]. Большое значение кроликов как мясных и шерстных объектов общеизвестно. Однако при сильном размножении они причинять большой вред полезным растениям, а также быть источником некоторых серьезных инфекционных заболеваний.

Читать еще:  Визенау карликовая свинья декоративный домашний питомец

Кролик как модельный объект интересен тем, что его организм очень чувствителен к воздействию разных биологических и физических факторов. Это классическое лабораторное животное, применяемое в разных биологических исследованиях.

Кролик – некрупный зверёк с длиной тела 31…45 см, массой тела 1,3…2,5 кг. Длина его ушей составляет 6…7,2 см. Ступни кролика опушены и имеют длинные и прямые когти. Окраска верхней части его тела обычно буровато-серая, но иногда имеет рыжеватый оттенок. При этом на спине кролика заметна тёмно-бурая продольная полоса, образованная концами остевых волос. Вдоль боков тела расположена тусклая светлая полоса, заканчивающаяся в области бедра широким пятном. Брюхо имеет белый или светло-серый цвет. Цвет хвоста кролика в верхней части буро-чёрный, снизу – белый, а кончик хвоста либо чёрный, либо серый. На концах ушей различима темная окантовка. Довольно часто (в 3…5 % случаев) встречаются особи аберрантной (нетипичной) окраски, т.е. чёрные, светло-серые, белые, пегие. Сезонной смены окраски кролик практически нет. Линяют кролики 2 раза в год.

Кролик – растительноядное животное. Его зубы имеют специфическое строение. Клыков у кролика нет. Резцы и коренные зубы растут на протяжении всей его жизни, т.к. они стачиваются в процессе употребления пищи.

Пищеварительный аппарат кролика хорошо развит. Желудок у него однокамерный и имеет достаточно большой объем. Желудочный сок выделяется непрерывно, имеет повышенную кислотность и отличается большой переваривающей силой, поэтому пищу эти животные могут поедать постоянно. Пища в желудке кролика находится от 3 до 10 часов, а через весь желудочно-кишечный тракт проходит примерно в течение 72 часов. Общая длина кишечника колеблется от 4 до 6 м [3].

Нормальная температура тела у кроликов составляет 38,5…39,5 °C. Она может меняться в зависимости от температуры окружающего воздуха. Зимой температура тела кролика может понижаться до 37,5 °C, а летом повышаться до 40,5…41 °C. Пульс составляет 120..160 ударов в минуту. Нормальное число дыхательных движений – 50…60 в минуту. Общее количество крови составляет примерно 280 мл (4,5…6,7 % от массы кролика). В зависимости от возраста, кролик выделяет в сутки 180…440 мл мочи [3].

К основным биологическим особенностям кроликов относятся их скороспелость и плодовитость, отсутствие сезонности в размножении, быстрый рост молодых особей и др. Показателем плодовитости кролика может служить следующий пример. Завезенные в 1859 г. в Австралию 12 пар кроликов за 6 лет размножились до 22 млн. особей и стали национальным бедствием.

Половая зрелость у кроликов наступает к четырех-пяти месячному возрасту. По достижении этого возраста их уже можно спаривать, при этом необходимо соблюдать, чтобы живая масса кроликов крупных и средних пород была не менее 3,5 кг, а животных мелких пород – 3,2 кг. Беременность у кролика продолжается в среднем 30 дней с колебаниями от 28 до 34…35 дней [3]. Кролики рождаются слепыми и голыми, с 16 молочными зубами. На 5…7 сутки у них появляется волосяной покров длиной 5–6 мм, состоящий из остевых и направляющих волос. К 20–25 дню первичный волосяной покров достигает своего полного развития. На 10…14-й день крольчата прозревают, а на 15..20-й день они начинают выходить из гнезда и самостоятельно питаться. Молочные зубы у кроликов выпадают с 18-го дня жизни и заменяются постоянными на 20…28-й день после рождения. Масса новорожденного кролика составляет примерно 40…65 г, на 6-й день после рождения она удваивается. В месячном возрасте масса кролика увеличивается в 10 раз. Такой быстрый рост и развитие крольчат связаны с большой концентрацией питательных веществ в молоке крольчихи. В среднем в нем содержится: 10–20 % жира, 13–15 % белка, 1,8–2,1 % молочного сахара, 0,64 % кальция и 0,44 % фосфора, витаминов и других веществ [3].

Организм кролика очень чувствителен к воздействию биологических агентов, таких как микроорганизмы, вирусы, также чувствителен к воздействию физических факторов, что позволяет широко использовать кроликов как модельные объекты в медицине и биологии при изготовлении и испытании различных препаратов. Они широко используются в исследованиях в разных областях, в том числе в фармакологии и токсикологии. Из всех лабораторных животных кролики наиболее чувствительны к воздействию стафилококков. Также кролики применяются для определения активности гормональных препаратов. Кролик – классический модельный объект, используемый для изучения функций яичников. При производстве и контроле вакцин, сывороток, а также для проведения проверок на бешенство, кролики являются незаменимыми. Кролики используются как модель для изучения ряда опухолей в онкологии, например карцинома Брауна-Пирс, дегтярный рак кожи. Кроликов часто применяют в качестве модельного объекта в бактериологических и иммунологических исследованиях. Кроликов применяют для производства поликлональных антител. Изолированное ухо кролика представляет собой наилучший объект для изучения влияния фармакологически активных веществ на сосуды. Через сосуды ушной раковины кролика пропускается раствор Рингера-Локка, и они проявляют жизнедеятельность при комнатной температуре, не требуя подогрева и дополнительного снабжения кислородом, так как ушная раковина кролика приспособлена к влиянию различных температур. При добавлении сосудосуживающих и сосудорасширяющих веществ его кровеносные сосуды соответственно суживаются и расширяются. Даже если изолированное ухо кролика хранить при низкой температуре, его сосуды остаются способными реагировать на вазоактивные вещества. Если изолированное ухо высушить, то после промывания раствором Рингера-Локка оно так же сохраняет эту способность. Кролик является единственным животным, используемым в тесте на пирогенность. Этот тест – важнейший показатель безопасности инъекционных и инфузионных лекарственных препаратов. Тест проводится для выявления пирогенов. Пирогены вызывают при введении в организм лихорадочное состояние. Для этого теста кролики выбраны по следующим причинам: сверхчувствительность к пирогенам; у кроликов и человека максимально близка чувствительность к пороговой дозе пирогена эндотоксинового типа; кролики неприхотливы к условиям содержания; у кроликов легко доступные ушные вены, в которые можно много раз вводить препараты в необходимом объеме. Кролики-альбиносы также используются при исследованиях влияния лекарственных препаратов, т.к. их глаза не пигментированы (кроме того, кролики обладают меньшей интенсивностью слезоотделения по сравнению с другими животными), что позволяет легче увидеть эффект воздействия препарата. Примером может служить тест Драйзе: кролик фиксируется в станке, после чего на роговицу глаза наносят исследуемое вещество и наблюдаются изменения роговицы.

Среди примеров применения кроликов в фармакологии можно выделить доклинические испытания фотодитазина (применяется в онкологической практике).

Несмотря на запрет на тестирование косметических продуктов на животных, кролики все еще используются в лабораторных опытах при производстве препаратов ботулинического токсина, которые применяют для устранения мимических морщин.

В настоящее время ученым удалось улучшить лабораторного кролика с использованием мышиного генома. Они выделили из ДНК мыши ген, ответственный за невосприимчивость к вирусу гепатита В, и ввели его в ДНК эмбрионов кроликов, В результате были получены кролики, устойчивые к этой инфекции. Это приобретенное свойство трансгенные особи передают по наследству. Использование подобных технологий для получения линий кроликов с совершенно новыми свойствами открывает современную страницу в использовании кроликов в научных исследованиях.

В последние годы использование кроликов повсеместно уменьшается в результате движения в защиту животных, однако потребность в этих лабораторных животных по-прежнему остается высокой.

Список литературы

Синовац, М. Кролики в медико-биологических исследованиях / М. Синовац // Казахстанский фармацевтический вестник. – №1, 2011. – с. 13-15.

Балакирев, Н.А. Кролиководство // Н. А. Балакирев, Е.А. Тинаева, Н.И. Тинаев и др.; Под ред. Н. А. Балакирева. – М.: КолосС, 2007. – 237 с.

Горбунов, В.В. Кролики. Разведение. Содержание. Уход / В.В. Горбунов. – М.: Астрель, 2012 – 184 с.

Зоология. – 3-е изд., перераб. и доп. – М.: Агропромиздат, 1989. – 384 с.

Фауна. Энциклопедия животных. – М.: ОЛМА-ПРЕСС Образование, 2006. – 640 с.

Лабораторные кролики какие породы используют, их роль в экспериментах

Чтобы не причинить вред людям, все новые изобретения в сфере медицины и косметики испытывают на зверей. На сегодняшний день для таких исследований применяют фактически всех популярных зверей. Рассмотрим, какой взнос в развитие медицины вносят зайцы, как их отбирают и как получают результаты.

Кто такие лабораторные зайцы

Так как зайцы от природы снабжены хорошей жизнестойкостью и плодовитостью, они прекрасно подойдут для исследований.

Лабораторных кроликов применяют с целью:

  • облегчения диагностики различных болезней;
  • определения патогенности различных штаммов микроорганизмов;
  • получение новых штаммов;
  • исследования действия вновь лекарственных средств и вакцин;
  • получения гемолитических сывороток и эритроцитов;
  • моделирования процесса воспаления и изучения последующей реакции организма;
  • изготовления на основе крови и органов зверей питательной среды, для выращивания возбудителей болезней для исследования.

Необходимые условия

Разведение грызунов, которые будут применяться для экспериментов, проводят в специализированных питомниках, которые содержатся при лабораториях, это дает возможность получать хороший материал для исследований.

Какие породы очень часто применяют

Многолетние испытания обнаружили породы кролей, которые больше подойдут для испытаний:

Какие болезни тестируют

Очень часто кролей применяют для тестирования следующих болезней:

  • стрептококк;
  • псевдотуберкулёз;
  • ревматизм;
  • сибирская язва;
  • сальмонелла;
  • ботулизм;
  • лихорадка;
  • экспериментальные опухоли.

Главные способы заражения зверей

Заболеть кроля можно несколькими вариантами. Рассмотрим их подробно.

Внутривенный способ

Для заражения применяют краевую вену уха. Место, куда будет выполнен укол, тщательно проводят дезинфекцию, а потом проводят действия для набухания вены, протирая ксилолом. Во время введения препарата необходимо вызвать гиперемию, для этого хвост опускают в тёплую воду.

Заражение через желудочно-кишечный тракт

Проводят двумя вариантами:

  1. Животное переворачивают вниз головой, выполняют это для того, чтобы все внутренности передвинулись к диафрагме и Во время проведения укола не были повреждены кишечник, мочевой пузырь и половые органы. Место для укола формируют так: живот разделяют на три части, местом прокола будет часть снизу. Кожу проводят дезинфекцию, берут складочку, вводят иглу, потом поворачивают её под прямым углом и быстрым толчком прокалывают брюшную стенку. Такой способ дает возможность сразу ввести очень и очень много заразного материала.
  2. Перемешивают микробную смесь с кормом, в данном варианте весьма не легко предусмотреть дозу. Более подходящие результаты получают, когда материал просто закапывают в рот. Для этого зверька фиксируют, при помощи пинцета открывают рот и не быстро, капля за каплей, вводят материал, при этом заяц должен проглотить каждую каплю.

Интрацеребральное заражение

Такое заражение проводят под наркозом, при помощи прокола тонкой кости в области надглазной борозды. Важно материал вводить не быстро, чтобы не привести к повышению внутричерепного давления и потере вводимого материала.

Проведение эксперимента

Перед заражением животного проводят подготовку к процедуре и приготавливают материал. Рассмотрим, как это выполняется.

Подготовка к заражению

в начале эксперимента животное:

  1. Клеймят. Отпечаток устанавливают на ухе, которое заранее отделывают спиртом.
  2. Взвешивают. Это можно создать на любых имеющихся весах, поместив на них зайца.
  3. Формируют пол. Животное держат за уши и холку, оттягивают хвост и ощупывают область полового отверстия: если там щель, то это самка, в другом случае это самец.
  4. Измеряют температуру. Для этого кончик термометра, смазанный вазелином, вводят в прямую кишку.

Материал для инфицирования зверей

Бактерии, которые вводят животному, растят в подходящей питательной обстановке, выполняя все условия. Очень часто материалом выступают: биологические жидкости пациента — кровь, плазма, мокрота, выделение из половых путей, а еще части заражённых тканей и органов.

Фиксация кроликов

Аналогичные действия проводят для того, чтобы введение биологического материала осуществлялось максимально качественно и быстро. Животное кладут на левый бок, с помощью одной руки держат холку, иную размещают на животе. Теперь зверька вытягивают во всю длину.

Содержание и питание кроликов в условиях лаборатории

Дабы получить максимально правильные экспериментальные результаты, важно обеспечить жывотным настоящее содержание и питание. Рассмотрим, что в себя включают такие требования.

Характерности содержания зверей

Лабораторных кроликов содержат в научно-исследовательских учреждениях, которые называются вивариями. Строения обязаны находится на возвышенности, в сухом месте, по близости устраивают вольеры, также рядом должен находиться участок земли. Вся площадь должна быть обнесена глухим забором.

Лабораторным животным обязаны быть снабжены:

  • настоящее питание и уход;
  • поддержание благоприятного состояния организма;
  • возможность удовлетворения физиологических потребностей;
  • содержание в соответствующих условиях;
  • каждодневный контроль содержания.

Зайцы могут быть расположены индивидуально или группами, все зависит от варианта исследования. В первом варианте применяют боксовую систему содержания. При подобном содержании каждая особь имеет отдельную комнату для жизни, доступ к сену и иному корму, а еще питью.

Читать еще:  Кормление хорька в домашних условиях

При групповом содержании, в одной клетке содержат до 6 особей, у каждого зверька те же права, как и при индивидуальном содержании.

Из каких отделов состоит виварий

Правильно выстроенный виварий состоит из таких отделов:

  1. Карантинный. В него помещают вновь прибывших особей.
  2. Испытательный. В нём находятся кроли, которые принимают прямое участие в опытах.
  3. Изоляционный. В него помещают зараженных зверей, которых ещё рано исключать.
  4. Манипуляционный кабинет. Здесь проводят исследование зверьков в начале эксперимента, а еще берут кровь и вакцинируют.

Для оснащения работы есть также следующие помещения:

  • химическая и гематологическая лаборатории;
  • гистологическая лаборатория;
  • помещения для хранения фармацевтических субстанций и препаратов;
  • комната персонала.

Чем кормят

Для чистоты эксперимента важно правильно кормить животное не только до заражения, но и после. Рацион должен быть максимально сбалансированным.

В нём должно обязательно находиться:

Для пополнения уровня жидкости в организме дают воду или пастеризованное молоко. Несоблюдение таких норм приведёт к уменьшению иммунитета, что будет помогать развитию ненужных болезней, а еще плохо отображаться на проведении эксперимента, ухудшать его результаты.

Что выполняют с умершими животными

После того, как животное погибло, его помещают в холод на день. Когда заяц погибает в ходе эксперимента, его вскрывают. После тушы сжигают.

Как видно, зайцы — животные, которых применяют не только для мяса или шкурок, а еще в виде домашнего животного, но и для лабораторных исследований. Как бы грустно это не звучало, они собственной смертью помогают людям решить многие сложности со здоровьем.

Породы кроликов. Как выбрать чистопородного кролика

Разнообразию пород кроликов и их разновидностей можно позавидовать. Далеко не каждый опытный кроликовод способен перечислить все существующие породы. Да это и не нужно. В нынешних условиях во большинстве хозяйств и на кроликофермах найти чистопородного кролика порой невыполнимая задача. К примеру, взять две породы кроликов, которые в большинстве случаев называют кролиководы на городских рынках:

– Порода кроликов Бабочки – к данной породе продавец может запросто причислить всех кроликов, которые имею пятнистую расцветку шкурки. Нередко кролиководы называют Бабочкой, совершенно не имея никакого представления о характерных особенностях этой породы (тема пород кроликов Бабочки затрагивались в статье о выборе племенного кролика, которую можно прочитать здесь ).

Нередко ошибочно выдают большинство кроликов имеющих серый окрас меха за Советскую шиншиллу или за Серого великана. Определяющим, а порой и единственным факторам приобщения к перечисленным породам кроликов является серый окрас меха. Основной причиной данному факту является то, что на практике мало кто занимается селекционным отбором племенного поголовья . В большинстве своем порода либо исчезает в процессе инбридинга, либо смешивается другой. В итоги отдельные чистокровные породы кроликов в России встречаются очень редко.

Столь удручающая ситуация во многом связана еще и с тем, что многие кролиководы любители весьма посредственно относятся к технологиям разведения и содержания кроликов, неграмотность кролиководов, низкое число племенных кроликоферм и т.д.

Изменить данную, можно сказать, плачевную, ситуацию можно путем создания, по примеру европейских кролиководов, клубов или обществ любителей кроликов. Данные клубы могут специализироваться на конкретных породах, позволяя отслеживать качество племенного материала. Проведение специализированных выставок способствует повышению общей грамотности кролиководов, так как они смогут видеть, как в идеале должна выглядеть та или иная порода кроликов. Во время проведения подобных мероприятий происходит обмен информацией между кролиководами, повышается общая грамотность, а также появляется стимул для дальнейшего развития данной отрасли.

Все существующие породы кроликов можно разделить на группы, в зависимости от их внешних отличительных признаков.

К первой группе относят семейство великанов с естественным волосяным покровом и средним весом взрослых особей от 6,5 до 10 кг и более.

К данной группе будут относиться такие породы кроликов как:

  • Серый немецкий великан;
  • Белый немецкий великан;
  • Пятнистый великан
  • Немецкий баран.

В последнее время многие кролиководы отдают свои предпочтения именно этой группе кроликов. Однако при разведении этих пород за частую кроликовод не всегда учитывает особенности их содержания. Данные породы могут достигать своих генетических размеров только в том случае, когда их выращивают в просторных клетках и обеспечиваются соответствующими кормами.

Часто попадаются на глаза объявления о продаже кроликов пород Фландр (Бельгийский великан), Ризен (немецкий великан), Обр, Эксбер. На вопрос, в чем отличительная особенность данных пород кроликов, авторы подобных объявлений в большинстве своем рассказывать множество различных небылиц, которые они слышали от других, а скорее всего, придумали сами. По большому счету, это один и тот же кролик, только называют его нечистоплотные господа или неграмотные заводчики по-разному с тем, чтобы показать широкий выбор пород кроликов в их хозяйстве. Для того, чтобы развеять множество всевозможных утверждений на эту тему, лучше всего углубиться в историю происхождения данной породы кроликов.

Кролики-великаны появились в одной из провинций нынешней Бельгии, а именно во Фландрии. Во многих источниках того времени упоминается появление, начиная с 1825 года на сельских подворьях крупных кроликов. В северной Фландрии они появились к 1850 году исключительно как результат мутации. Причем неизвестно, кто и когда начал поддерживать эту породу, сразу же завоевавшую повышенное внимание кролиководов, разводивших ранее кроликов других пород и расцветок.

В 1890 году фландрийские великаны достигали веса от 4 до 5 кг и длины до 60 см. Они имели такую же расцветку, как и дикие кролики. У некоторых имелись пятна на лбу и груди, белые лапы и висящие (либо прижатые уши). Породу сразу же полюбили практически все кролиководы Европы, особенно в Германии. До первой мировой войны кролики этой породы составляли 50% общего поголовья. Основанием для такого отношения были размеры и рентабельность разведения. На сегодняшний день заслуга в селекции и разведении данного семейства кроликов большей частью принадлежит немецким кролиководам. Усилиями немецких селекционеров порода бельгийских великанов была улучшена по всем показателям: увеличен средний вес – от 6,5 кг до 10 кг и более, длина тела – от 76 см до 100 см.

Рабочий вес нормальных половозрелых особей составляет 7-9 кг.

С 1937 года бельгийских великанов во всех официальных каталогах именуют как немецких великанов. Благодаря усилиям многих людей, увлекающихся данным направлением в кролиководстве, были получены разновидности великанов – белые, пятнистые, серые с заячьим окрасом, черные и т.д. В 2003 году немецкие великаны были признаны одной из лучших пород в мире.

Часто встречаются объявления о продаже кроликов-великанов, родители которых весят по 12-15 кг. Это заведомая лож со стороны продавца. Подобную недостоверную информацию распространяют некоторые кролиководы, пытаясь привлечь к себе внимание со стороны неопытных еще в этом деле людей. При весе рабочего кролика более 9 кг его репродуктивные качества значительно ухудшаются. При весе 12-15 кг они практически перестают размножаться, поэтому, когда вам показывают сидящего в коробке 15-килограммового крола и говорят, что сидящие в соседней коробке крольчата его дети – это откровенное вранье. Существуют особи великанов, набирающие по 18-20 кг веса, однако они при такой массе не способны уже размножаться и годятся только для того, чтобы похвастаться перед соседом.

При всей своей внешней привлекательности великаны оказались абсолютно нерентабельны в поточном разведении кроликов на мясо. Основными проблемами промышленного разведения великанов на мясо являются довольно долгий срок полового созревания, максимальная интенсивность роста с 5-7 месяцев, значительный расход кормов, низкая молочность крольчих и высокая смертность молодняка, низкий процент выхода мяса при убое и т.д. Великаны хорошо приживаются и используются на небольших подворьях, когда человек разводит эту породу для личного потребления. В этом случае они очень удобны, так как рост животного продолжается практически до года. Соответственно, его не обязательно отправлять на мясо в возрасте 5-6 месяцев, как это бывает у кроликов средних пород.

Ко второй группе относятся породы кроликов, вес которых достигает 5,5 кг. Представителями данной категории являются: Французский баран, Английский баран, Венский голубой, Новозеландский белый и красный, Калифорнийский, Немецкий большой серебристый, Бургундский и т.д. Эта группа кроликов (или ее представители) получила наибольшее распространение среди кролиководов, что обусловлено неприхотливостью в содержании. Они не нуждаются в таких достаточно больших и просторных клетках, как семейство великанов. Да и расход кормов сравнительно небольшой. Основным преимуществом средних пород кроликов является их скороспелость и довольно приличный выход мяса при убое. Кролики таких пород как Новозеландская белая, Новозеландская красная, Венский голубой и Калифорнийская идеально подходят для массового поточного разведения кроликов на мясо. Особенность этих пород заключается в том, что они уже в возрасте 4 месяцев полностью половозрелы, крольчихи обладают высокой молочностью, процент смертности крольчат значительно ниже, чем у великанов, выход мяса при убое составляет 60%, они неприхотливы в содержании, главной положительной стороной является способность к воспроизводству в любое время года. Самым ярким представителем данной группы является Калифорнийская порода. Ее можно рекомендовать для начинающих кролиководов , не имеющих опыта в разведении кроликов.

Представителями третьей группы являются коротковолосые кролики, достигающие живого веса до 4,5 кг. Так называемое семейство Рексов , чьи шкурки весьма ценятся как на европейских меховых аукционах, так и на просторах нашей страны за качество и необычность своего меха. Средний вес кроликов-рексов колеблется в диапазоне от 3,7 до 4,3 кг. Обычно за один окрол крольчиха приносит 4-6 крольчат. Смертность среди подрастающего потомства у Рексов немного выше, чем у остальных пород кроликов. Некоторую проблему при разведении Рексов создает их склонность к ожирению. У этого семейства кроликов данный недостаток выражен наиболее ярко. При всем этом разведением кроликов-рексов с каждым годом занимается все больше людей. Привлекает в большей степени стоимость шкурки и повышенный спрос на нее. Наибольшее распространение получили такие породы как белый Рекс, черный Рекс и Рекс кастор. Белые шкурки максимально подходят под окраску и с их помощью изготавливаются имитации под более ценные меха, такие как норка и соболь. Кроликов породы Рекс кастор даже прозвали «Король бобров». Шкурки касторов не приходится даже красить, после небольшой стрижки они идеально имитируют мех бобра, поэтому и получили такое прозвище.

Четвертую группу представляют кролики сатиновых пород весом до 4 кг. Представителями данной группы являются: Голубой сатиновый, Гавана, Сиамский сатиновый, Тюрингенский, Черный сатиновый и т.д. Кролики сатиновых пород получили наибольшее распространение в европейских странах. Чаще всего их разводят в декоративных целях. На территории нашей страны они встречаются крайне редко из-за отсутствия племенного материала и больших сложностей в его приобретении за пределами России.

Пятую группу составляют мелкие породы кроликов, имеющие живой вес до 3,75 кг. Это такие породы как: Сепаратор, Немецкий мелкий баран, Английский пятнистый, Огненный, Жемчужная белка, Мардер и многие другие. К данной группе относятся и практически все карликовые породы кроликов весом до 2-х кг (Гермелин, Цветной карлик, Крликовый баран и т.д.).

К шестой группе можно отнести все пуховые порода кроликов . Это такие животные как Ангорский белый и Цветной, Лисий, Цветной арлекин и т.д.

Зачем же нужны породистые кролики и чем же они лучше тех помесей, которые продаются у нас на «птичьих рынках» в каждом городе? Покупая породистого кролика, вы в первую очередь выбираете его по тем характеристикам, которые вас в нем привлекают. Представители любой из пород передают своему потомству все параметры, свойственные данной породе, без каких бы то ни было изменений. Вы точно знаете, каким будет потомство от того или иного породистого кролика. Если вы все же приобрели беспородное животное, то нет никаких гарантий, что потомство, полученное от вашего кролика, будет похожим на него. В большинстве случаев в помете у беспородной крольчихи могут быть крольчата чуть ли ни всех цветов радуги. Волосяной покров у них может быть коротким как у Рексов, длинным и пушистым – как у Ангоры. Представитель любой из пород оценивается в первую очередь по своему экстерьеру, весу и качеству меха. Отсюда и семейства кроликов, которых разводят для мясного производства , некоторых – для мясо-шкуркового производства, каких то – на мех, а кого то – в декоративных целях.

Ссылка на основную публикацию
Adblock
detector